ELISA (Technique Immuno-Enzymatique) : Principe du test | |
• Les puits de microplaque en polystyrène coatés avec des antigènes purifiés et biochimiquement caractérisés sont utilisés comme phase solide contenant les antigènes immobilisés. • Si l'échantillon est positif, les anticorps spécifiques dans l'échantillon de sérum dilué se lient aux antigènes couplés à la phase solide. • Dans une seconde étape, les anticorps liés sont détectés avec des anticorps anti-immunoglobulines humaines couplés à la peroxydase. • Dans une troisième étape, les anticorps liés sont rendus visibles en utilisant une solution chromogène/substrat capable de générer une réaction colorée. L'intensité de la coloration produite est proportionnelle à la concentration de l'anticorps dans l'échantillon de sérum. • L'ELISA "monospécifique" (immuno-dosages enzymatiques avec un seul antigène) fournit un dosage quantitatif in vitro pour la détection des anticorps. L'ELISA "Profil" fournit un dosage semi-quantitatif in vitro pour la détection de différents anticorps sur une seule barrette de microplaque. La phase solide de l'ELISA "Pool" est coatée avec un mélange d'antigènes utilisés pour la détection semi-quantitative des anticorps dont la spécificité doit être analysée ensuite par des dosages monospécifiques. |
EUROIMMUN France : les tests ELISA |
• Réactifs prêts à l'emploi (sauf tampon de lavage concentré).
• Les conjugués sont identifiables par coloration :
• Différents tests peuvent être réalisés sur une même microplaque, les temps d'incubation (30 min, 30 min, 15 min) sont identiques pour la majorité des ELISA. Ceci présente un avantage important lors de l'automatisation de ces techniques. • Incubation à température ambiante. • Compatibilité avec tous les lecteurs et les laveurs de microplaque et automates ELISA. |
ELISA : Evaluation quantitative | |
• 3 sérums de calibration pour les tests quantitatifs :
• Barrettes emballées dans un sachet hermétique. |
Mode Opératoire (entièrement automatisable) | |||
1 | Incubation de l'échantillon | 30' |
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Par puits, déposer 100 µl de chaque calibrateur (1, 2 et 3) non-dilué, de sérum de contrôle (positif ou négatif) ou de sérum échantillon dilué. | |||
2 | Lavage | ||
Vider les puits, laver 3 fois avec 300 µl de tampon de lavage | |||
3 | Incubation avec le conjugué | 30' |
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Par puits, déposer 100 µl de conjugué | |||
4 | Lavage | ||
Vider les puits, laver 3 fois avec 300 µl de tampon de lavage | |||
5 | Incubation avec le substrat | 15' |
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Par puits, déposer 100 µl de solution chromogène/substrat | |||
6 | Arrêt | ||
Par puits, déposer 100 µl de solution d'arrêt | |||
7 | Lecture photométrique | ||
Lecture à 450 nm (référence à 620 nm). A réaliser dans les 30 minutes suivant l'arrêt de la réaction. |